Magarose-NHS偶聯(lián)用磁珠,NHS活化瓊脂糖磁珠/ NHS瓊脂糖微球
NHS 活化的瓊脂糖磁珠(Magarose-NHS)將蛋白質(zhì)簡(jiǎn)單有效地共價(jià)固定到磁珠載體上,為抗體、抗原或其他生物分子的親和純化提供了有價(jià)值的方法?;罨沫傊谴胖楹心軌蚺c蛋白質(zhì)或其他分子上的伯胺反應(yīng)形成穩(wěn)定的酰胺鍵的 N-羥基琥珀酰亞胺(NHS)官能團(tuán)。耦合反應(yīng)在 pH 7~9 的無(wú)胺緩沖液中進(jìn)行。不管配體的分子量或等電點(diǎn)(PI)耦合反應(yīng)的效率均大于 80%。一旦配體被固定,所制備的瓊脂糖磁珠即可以被應(yīng)用到多重親和純化程序中。
英文名稱:Magarose-NHS
中文名稱:NHS活化瓊脂糖磁珠
NHS瓊脂糖微球
磁珠濃度:25% (v/v) in *** 異丙醇
配基密度:~ 50 μmol NHS/ ml磁珠
介質(zhì):6%交聯(lián)磁性瓊脂糖
粒徑:20-45μm
配體結(jié)合:>20 mg IgG/ml磁珠
保存:2~8℃
NHS- Activated Magarose Beads 是一種預(yù)活化的瓊脂糖磁性微球,可以直接用于含氨基的蛋白或多肽的耦聯(lián)。預(yù)活化介質(zhì)可以根據(jù)需要制備成***親和介質(zhì),快速有效地從復(fù) 雜體系中一步純化相應(yīng)的物質(zhì)。
使用方法
1. 緩沖液
所有的水和緩沖液均用 0.22 μm 或 0.45 μm 的濾膜進(jìn)行過(guò)濾。
1)Washing Buffer A: 1 mM 鹽酸,使用前冷卻到 4?C;
2)Coupling Buffer A: 100 mM 2-嗎啉乙磺酸 MES,pH 4.8(用于等電點(diǎn)小于 7 的生物分子的偶聯(lián));
3)Coupling Buffer B: 200 mM NaHCO3, pH 8.3(用于等電點(diǎn)大于 7 的生物分子的偶聯(lián));
4)Blocking Buffer: 3 M 乙醇胺,pH 9.0;
5)Storage Buffer: 含質(zhì)量分?jǐn)?shù)為 0.05%****的 PBS 緩沖液或者根據(jù)客戶自己需求采用其他緩沖液。
2. 流程關(guān)鍵點(diǎn)
1)其中磁珠洗滌要嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)采用冷卻的 Washing Buffer A快速洗滌 ,以防磁珠在洗滌過(guò)程中 NHS 基團(tuán)水解;
2)蛋白偶聯(lián)過(guò)程中,首先要通過(guò)實(shí)驗(yàn)確定合適的 Coupling Buffer(主要包括 Coupling Buffer A 、Coupling Buffer B)、50 mM 硼酸溶液pH 8.5、100mM磷酸緩沖液,100mM NaCl,pH7.4這四種);
3)確定合適的Coupling Buffer后,再以此Coupling Buffer 為基礎(chǔ),確定合適的偶聯(lián)蛋白濃度,因?yàn)榈鞍诐舛仍礁?,偶?lián)到磁珠上的蛋白的量會(huì)越大(這是由于 NHS 基團(tuán)跟蛋白偶聯(lián)和 NHS 基團(tuán)本身水解是一對(duì)競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng))。當(dāng)然此處要綜合考慮使用性能和成本,有些客戶偶聯(lián)少量的蛋白便可滿足使用需求,這時(shí)采用低濃度的蛋白便可,這樣可以降***。
4)封閉這一步可以采用3 M 乙醇胺,也可使用 Tris 緩沖液(100 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 8.0),封閉時(shí)間不得低于 2 h,如果化學(xué)封閉后背景仍然很高,還可以額外加一步 BSA 封閉。
3. 蛋白偶聯(lián)操作步驟
以下操作過(guò)程以取磁珠樣品 400 μL,采用 1.5 mL EP 管為例介紹。用戶可根據(jù)自身需求按比例調(diào)整。
蛋白溶液配制:取適量待偶聯(lián)蛋白用 Coupling Buffer 溶解,配成濃度為≥3.0 mg/mL 的蛋白溶液。已經(jīng)保存于 buffer中的蛋白,需要通過(guò)透析或者脫鹽的方法***除去原有 buffer 里含伯胺基的物質(zhì),然后再用 Coupling Buffer 配成濃度為≥3.0 mg/mL 的蛋白溶液,將配制好的蛋白溶液于4℃保存?zhèn)溆谩?br/>
注: (1)為達(dá)到更好的性能,蛋白濃度≥3.0 mg/mL,這樣偶聯(lián)效率會(huì)更高,此處需綜合考慮成本和使用要求; (2)蛋白溶液中不能含有帶伯氨基的成分,比如 Tris,甘氨酸,明膠,BSA 等;
1)取 400 μL 25%磁珠懸浮液于 1.5 mL EP 管中。磁分離,去除上清液。
注:磁珠取樣前要反復(fù)顛倒、使用渦旋振蕩器使其混合均勻,以保證實(shí)驗(yàn)的同一性,每取一次樣需要重新混勻。
2)加 1 mL 2~8℃的 Washing Buffer A于離心管中,渦旋 15 s,使磁珠混合均勻。將 EP 管置于磁性分離架內(nèi),富集磁珠,去除上清液。
3)加 200 μL 蛋白溶液于 EP 管中,渦旋 30 s,使其混合均勻。
注:磁珠洗滌后要立即加入蛋白溶液。
4)將 EP 管渦旋 15 s,置于垂直混合儀上,室溫混合 2~4 h。如果垂直混合不均勻,則反應(yīng)前 30 min,每隔5 min 取下 EP 管渦旋 15 s。此后,每隔 15 min,取下 EP 管渦旋 15 s。
注:如有需要可以在 4?C 反應(yīng)過(guò)夜。
5)采用磁性分離架富集磁珠,保存上清。加 1 mL Blocking Buffer于 EP 管中,渦旋 30 s,將 EP 管置于磁性分離架內(nèi),富集磁珠,棄上清液。
注:Blocking Buffer除了試劑盒中提供的 3 M 乙醇胺外,也可以使用 100 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 8.0 等其它封端試劑。
6)加 1 mL Blocking Buffer于 EP 管中,渦旋 30 s,將 EP 管置垂直混合儀中室溫反應(yīng)2 h。將 EP 管置于磁性分離架內(nèi),富集磁珠,棄上清液。
7)加 1 mL 超純水于 EP 管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,棄上清液。
8)加 1 mL Storage Buffer(比如含 0.05%****的 PBS 緩沖液,或者客戶根據(jù)自己實(shí)際需求選合適的保存溶液 )于 EP 管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,棄上清液。重復(fù)該操作 2 次。
9)加入 400 μL Storage Buffer于 EP 管中,充分混合,4?C 保存?zhèn)溆谩?br/>
偶聯(lián)用瓊脂糖磁珠
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